Microtomo de rotación Leica HistoCore NANOCUT R

1. Modo de trabajo automático o manual.
2. Control mediante un panel ergonómico e independiente.
3. Portamuestras para inclusiones en parafina y resinas.
4. Base para cuchillas de acero desechables y de diamante.
5. Espesor mínimo de las secciones de 0,5 µm.
6. Portamicroscopio integrado.

Vibratomo Leica VT1200 S

1. Para cortar secciones gruesas de muestras sin incluirpor vibración de la cuchilla (Gillette).
2. Modo de trabajo automático o manual.
3. Panel de mandos independiente.
4. Lupa integrada.

Dispensador de parafina Leica EG 1110

Horno de hibridación Amersham

• Filtros para fluorescencia:
  
  

• Objetivos:
  
  

*DIC: contraste diferencial interferencial

La captura de imágenes se realiza con una cámara color CMOS DC.20000i euromex (20 Mpixels).

• Objetivos:
  
  

1. iluminación diascópica y episcópica
2. objetivo planapocromático 1.0x/0.125
3. aumento del portalentes 0.8x – 8x
4. filtros para fluorescencia
   
   

La captura de imágenes se realiza con una cámara CCD color Leica DFC 400C (5 Mpixels.)

• Filtros de fluorescencia:
  
  

• Objetivos:
  
  

La captura de imágenes se realiza con una cámara CCD color Leica DFC 300FX (1,4 Mpixels).

1. Iluminación episcópica
2. Objetivos 0.5x y 1.0x
3. Aumento del portalentes 0.63x – 5.7x
4. Bloques de filtros para fluorescencia

1. Iluminación episcópica
2. Objetivo PLAN 1.0x
3. Aumento del portalentes 0.63x – 6x

Captura imágenes de bioluminiscencia, quimioluminiscencia y fluorescencia (filtro para GFP).

1. resolución 1024 x 1024 px
2. rango de sensibilidad de 300 a 1050 nm
3. eficiencia cuántica (QY) del 90% a 620 nm
4. rango dinámico de 82 dB

1. panel externo para el control y manejo de todas las funciones motorizadas
2. iluminación episcópica mediante dos guías de luz semirrígidas con lámpara de LED
3. base de luz transmitida con tres tipos de iluminación: campo claro, contraste de Rotermann y campo oscuro
4. objetivo apocromático 1X: apertura numérica 0,17 y distancia de trabajo 61,5 mm
5. objetivo apocromático 2X: apertura numérica 0,35 y distancia de trabajo 20,1 mm
6. zoom motorizado con aumento variable entre 0,78X y 16X (rango total 20,5)
7. ruta de fluorescencia motorizada
8. Filtros para fluorescencia:

Características:

1. Sensor CMOS FL-400
2. Número de pixels: 2048 x 2048
3. Área efectiva: 13,312 mm x 13,312 mm
4. Velocidad: 30 frames/s a máxima resolución
5. Eficiencia cuántica (QY) > 70% at 600 nm
6. Binning digital 2x2 / 4x4

Características:

• tecnología Electron Multiplying Back Thinned Transfer CCD
• chip de 512x512 píxeles con un tamaño de 16x16 μm
• velocidad de lectura de la imagen completa de70 fps
• binning 1x1, 2x2 y 4x4
• ganancia EM (electron multiplying) entre 1 y 1200x
• Eficiencia cuántica (QY) > 90%
• ganancia analógica entre 0,5x y 1x para modo EM y entre 1x y 5x para modo no EM
• refrigeración por aire (-65ºC) y agua (-80ºC)
• digitalización de 16 bits

1. panel de control mediante pantalla táctil incorporada en el estativo

2. lámpara de metal haluro de 120 W

Filtros para fluorescencia:

Objetivos:

*BF = campo claro, DIC = contraste diferencial interferencial, FLUO = Fluorescencia

Cámara CCD Axiocam 503 color

1. pixels: 1936 x 1460
2. tamaño de pixel: 4.54 μm x 4.54 μm

Módulo confocal

Láseres

1. 405, 488, 458, 514, 561 and 633 nm

Detectores

1. 3 PMTs espectrales
2. Airyscan para superresolución
3. 1 PMT para luz transmitida

Platina motorizada XY

1. velocidad: 100 mm/s
2. resolución: 0,1 µm
3. reproducibilidad <1 µm

Platina motorizada Z

1. rango: 500 μm
2. velocidad: 5 mm/sec
3. reproducibilidad: +/- 5 nm

Software

1. ZEN black: adquisición de imágenes
2. ZEN blue: image processing (3D, colocalización)

Luminómetro para realizar cribados de experimentos de inmunofluorescencia (simples o dobles marcados) con objeto de seleccionar muestras positivas con señal de fluorescencia para su posterior observación y análisis en el microscopio confocal.

Características técnicas:

1. Fluorescencia y Luminiscencia.
2. FRET, TR-FRET y BRET.
3. Rango de longitud de excitación: 200-1000 nm
4. Rango de longitud de emisión: 270-840 nm
5. Microplacas de 6 a 384 pocillos.
6. Agitación orbital.
7. Control de temperatura de 4 a 45°C.

Microscopio invertido automático Leica DMI6000CS 

1. panel de control táctil STP6000

2. smart move: consola para mover la platina en XY y Z 

3. fuente de luz de fluorescencia Leica EL6000, con lámpara de metal haluro de 120 

4. Filtros para fluorescencia:
   
   

• Objetivos:
  
  

*BF = campo claro, DIC = contraste diferencial interferencial, FLUO = fluorescencia

Módulo confocal

Sistema de barrido FOV: 

1. velocidad hasta 1.800 Hz (3.600 Hz en modo bidireccional)
2. hasta 7 fps @ 512 x 512 píxeles
3. formato de imagen hasta 8.192 x 8.192 píxeles

Láseres: 

1. CW (405 nm). 50 mW
2. Ar (458, 488 y 514 nm). 100 mW
3. DPSS (561 nm). 20 mW
4. He-Ne (633 nm). 10 mW

Detectores: 

1. 4 espectrales para fluorescencia y reflexión (2 PMT y 2 HyD)
2. 1 (no confocal) para luz transmitida

Divisor de haz LIAchroic que incluye los siguientes dicroicos: 

1. substrate (405)
2. 488/561/633
3. 458/514/561
4. 476/488
5. RT 15/85 (reflexión)
6. 488/561

Platina galvanométrica super Z: 

1. paso mínimo 20 nm
2. rango de recorrido 1500 µm

Platina motorizada de scanning XY: 

1. velocidad: 10 mm/segundo
2. resolución 0,02-0,04 µm
3. reproducibilidad <1 µm

Software 

LAS X con tutorial para análisis de FRET & FRAP y visor 3D

Responsable: Jaime Tome Amat - Profesor/a Contratado/a Doctor/a

Citómetro de flujo separador y analizador celular Sony MA900 (S38)

Para la separación, recuento y análisis de poblaciones celulares.
 

1. láseres 405, 488 y 561 nm
2. 12 fotomultiplicadores (PMT) para detectar los siguientes fluorocromos: DAPI, EBFP, ECFP, EGFP, sfGFP, FITC, EYFP, tdTomato, mRFP, mCherry
3. detectores frontal (FSC) y lateral (SSC), para determinar el tamaño y complejidad interna de las células
4. boquillas (nozzles) de 70 y 100 μm para células de diferentes tamaños
5. separación de poblaciones celulares en tubos de 1,5 ml y 5 ml en dos o cuatro vías y de 15 ml en dos vías
6. adaptadores placas de 6, 24, 48, 96 y 384 pocillos, y de PCR
7. estación de trabajo y software de análisis

Citómetro MACSQuant VYB (S38)

Citómetro de flujo para medir características de fluorescencia (entre otras) de cultivos, especialmente bacterianos. Este equipo se ubica en el Laboratorio S38 de la planta -1 (sótano) del edificio principal del CBGP y forma parte del equipamiento asociado al programa científico SynBIO2 (Biología Sintética y Bioingeniería).

El equipo MACSQuant VYB incorpora un módulo para la automatización de la recogida de un alto número de muestras, por lo que acepta la entrada de placas de 96 pocillos, con opción a su vez de entrada de un único tubo o en grupos de 24.

Dentro de las características del equipo, incluye una optimización del tipo y conjunto de fotomultiplicadores para la medición de proteínas fluorescentes expresadas intracelularmente.

Características técnicas del sistema de citometría de flujo:

1. 3 láseres de excitación: Violeta (405 nm, 65 mW), Azul (488nm, 50 mW), Amarillo (561nm, 100 mW),
2. 10 fotomultiplicadores (PMT’s) que permiten medir simultáneamente 10 parámetros ópticos (8 de fluorescencia más FSC para tamaño y SSC para complejidad celular).
3. Columna de Enriquecimiento Magnético integrada para la selección y análisis de poblaciones poco frecuentes.
4. Preparador automático integrado de muestras que permite añadir reactivos, diluir muestras, agitar e incubar, controlado por el software del citómetro.
5. Permite la toma de muestras en tubo individual (tanto tubos de 1 y 2 mL como tubos de citometría de 5, 15 y 50 mL) o racks automatizados de 24 o 96 pocillos, todo controlado por el software.
6. Permitir ciclos de encendido y apagado, además de limpieza entre muestra y muestra, automáticos.
7. Software con función de agrupamiento de datos para una mejor comparación y presentación de los gráficos.
8. Compensación automática mediante matriz de 8/14 colores.

Responsable: Miguel Ángel Moreno Risueño - Profesor/a Titular de Universidad

Para determinar la calidad de DNA y RNA mediante electroforesis automática para su utilización en análisis de Next Generation Sequencing. 

1. determinación de la calidad/integridad (cantidad/concentración y electroferograma) de ARN,
   librerías para NGS, ADN genómico, cADN
2. verificación de tamaño y cantidad/concentración de productos de PCR
3. estación de trabajo y software de análisis

Responsable: Jose Manuel Palacios Alberti - Catedratico/a de Universidad

Sistema miniaturizado de monitorización de crecimiento microbiano.

1. 96 pocillos
2. sistema de agitación continua (lineal, orbital, doble orbital)
3. rango de temperatura de incubación 15-65ºC
4. dos filtros de 405 y 600 nm y un tercero configurable entre 400 y 600 nm.
5. estación de trabajo y software de análisis